- eDNA元条形码测序通过分析脱落细胞、粘液、鳞片和粪便,可以从单一海水样本中检测数百种物种,为视觉普查方法提供了非侵入性补充。
- 礁石生命调查(RLS)已培训了1,000多名志愿者科学潜水员,他们在44个国家的4,000多个地点应用标准化调查方法,生成了现存最大的全球礁鱼数据集之一。
- eOceans将日常潜水日志转变为结构化科学数据,从而能够对软骨鱼类和通过机构调查很少捕获的其他物种进行大规模趋势分析。
- 来自休闲潜水员的iNaturalist记录已被证明可以补充结构化断面调查,显著增加了在区域尺度上检测稀有和隐秘礁鱼物种的能力。
- eDNA元条形码测序可以区分MPA内部和外部的群落组成,为合规性监测和生态基线提供了一种经济高效、可扩展的工具。
- 主要挑战包括热带水域中eDNA信号的降解、参考条形码数据库中的分类学空白,以及通过标准化培训和验证协议确保公民科学数据质量。
2016年,一群海洋生物学家宣布,一桶海水含有足够的脱落遗传物质,足以重建礁石系统中鱼类、无脊椎动物和微生物的普查——而无需撒网或潜水员下水[1]。自那时以来,这种能力——环境DNA (eDNA) 元条形码测序——已从实验室中的好奇心发展成为前线保护工具,能够检测视觉调查遗漏的物种,并以统计学上的严谨性区分海洋保护区内外群落[2]。同时,由受过训练的志愿者潜水员领导的结构化公民科学平台——礁石生命调查(Reef Life Survey)、eOceans和更广泛的iNaturalist网络——已经生成了任何有资金支持的研究项目都无法单独复制的数据集。eDNA和公民科学共同消除了专业监测与公众参与之间的界限,带来了激动人心的可能性,也提出了关于数据质量、隐私和治理的重要问题。
什么是eDNA元条形码测序,为什么它对珊瑚礁很重要?
生活在海洋中的每个生物都会留下生化痕迹。鱼类脱落上皮细胞和粘液;无脊椎动物释放配子和粪便;甚至微观藻类也会将遗传物质脱落到水体中。环境DNA (eDNA)是悬浮在水样中这些脱落遗传物质的统称。通过简单的过滤收集,提取,用通用引物扩增,并在下一代平台上测序,这些eDNA可以与参考条形码数据库进行匹配,从而生成所采样环境中所有生物的物种清单——这一过程称为元条形码测序[1]。
对于珊瑚礁生态系统而言,其影响是深远的。传统监测依赖于水下视觉普查(UVC)——经过训练的潜水员沿着标准化的断面游动,记录物种并估计丰度。UVC功能强大但受限:它偏爱显眼的、日间活跃的物种;它需要广泛的潜水员培训;它不能轻易捕捉隐秘的或夜间活动的分类群;成本和物流将其限制在全球珊瑚礁面积的极小部分。eDNA元条形码测序绕过了许多这些瓶颈。2022年《英国皇家学会会刊B》的一项研究使用元条形码测序,仅通过水样对大西洋、印度洋和太平洋的珊瑚礁鱼类群落进行了表征,恢复了2,417种鱼类,并揭示了跨洋生物地理模式,这些模式与同一地点通过视觉调查获得的物种清单相符但大大扩展[1]。作者指出,eDNA检测到了视觉调查持续遗漏的稀有和隐秘物种——包括几种具有保护意义的物种。
eDNA在海洋保护区:从理论到合规工具
eDNA在海洋保护中最实际和最紧迫的应用是海洋保护区(MPA)监测。截至2024年,海洋保护区覆盖了全球海洋约8%的面积,但覆盖范围极不均衡,监测质量更是如此。大多数发展中国家的MPA没有系统的生态基线、没有持续的调查项目,也没有检测生态随时间变化的机制。eDNA提供了一个部分解决方案。
Gold及其同事在2021年《PLoS ONE》上发表的一项里程碑式研究,测试了eDNA元条形码测序作为加利福尼亚海峡群岛国家海洋保护区生物监测工具的有效性[2]。该团队使用浮潜者和水肺潜水员在MPA边界内外站点收集的水样,证明了由eDNA揭示的鱼类群落组成在完全受保护区域与相邻渔区之间存在显著差异,MPA内的鱼类物种丰富度更高。关键的是,这些差异与长期视觉普查数据的预测一致,验证了eDNA作为一种可靠的监测信号。2022年《生态指标》杂志的一项研究更进一步,试图直接从eDNA读数比例中推导出定量生态指标,发现MPA保护水平是推导指数的重要预测因子[3]。
地中海提供了一个特别深入研究的例子。Capurso及其同事在2023年《海洋政策》上发表的一项分析评估了eDNA元条形码测序是否能提高地中海海域网络中100多个MPA的监测成本效益[4]。研究发现,每个MPA五个到十个站点进行一次eDNA采样事件,可以提供与三到四次年度视觉普查调查相当的群落水平信息,而劳动力成本约为三分之一。作者建议采用混合方法:eDNA用于初步基线特征描述和快速响应监测,UVC用于详细丰度估计和DNA信号本身无法提供的行为数据[4]。
礁石生命调查:科学规模的公民科学
eDNA代表着技术前沿,而礁石生命调查(RLS)项目则展示了经过精心训练的人类观察者在几十年中可以取得的成就。由塔斯马尼亚大学的鱼类学家Graham Edgar创立,RLS培训志愿者休闲潜水员进行严格的50米带状断面调查——在世界各地每个地点使用相同的方法记录所有鱼类和可移动无脊椎动物的标准体形类别[5]。培训内容丰富:志愿者在贡献数据之前完成书面考试和水下评估;调查由两名受过训练的潜水员进行;数据在录入数据库之前由协调员验证。
通过这种模式实现的规模令人震惊。截至2020年,RLS已经从44个国家的4,000多个站点汇集了数据,代表了现存地理范围最全面的标准化礁鱼数据集[6]。该数据集支撑了数十篇同行评审的出版物,研究了纬度多样性梯度、MPA的有效性、气候驱动的范围变化以及全球礁鱼丰度的预测因子。Edgar和Stuart-Smith在2014年《科学数据》上的描述性论文确立了该数据库的全球范围和方法严谨性,证明了经过充分培训的志愿者收集的数据与专业科学调查的精确性和准确性相匹配[5]。2020年《生物保护》杂志的一项综合研究表明,RLS数据直接为澳大利亚、美国、葡萄牙和新西兰的MPA边界决策和渔业评估提供了信息[6]。
RLS对科学特别有价值的原因不仅在于其数量,还在于其标准化。当每个观测结果都使用相同的协议(相同的断面宽度、相同的物种识别标准、相同的尺寸分类箱)收集时,来自日本礁石和南非礁石的数据可以直接进行比较。这是公民科学要获得科学可信度所必须解决的根本挑战,而RLS的解决方案——严格的前期培训、专家验证和协议纪律——已成为其他项目的模板。
每个潜水员都有一个日志。这些日志中的大多数都包含丰富的生态信息——物种目击、水下能见度、温度、行为观察——但这些信息从未触及科学家。eOceans由海洋生态学家Christine Ward-Paige创建,是一个旨在通过一个移动优先的应用程序,将日常潜水记录转换为结构化科学数据的平台,该应用程序提示潜水员在潜水期间或之后立即记录标准化字段[7]。由此产生的数据库跨越了数百万次跨洋的个人潜水,特别是在软骨鱼(鲨鱼和鳐鱼)目击方面表现出色——这些分类群因其密度低、活动范围大和深度分布可变等特点,传统方法很难对其进行调查。
Ward-Paige及其同事(2018年)的一项预印本案例研究,利用来自泰国的eOceans数据证明了这一方法,表明休闲潜水员的潜水日志记录可以检测到鲨鱼遭遇率的时间和空间趋势,这些趋势与已知的渔业压力和季节性海洋学模式一致[7]。其实际意义重大:在缺乏资金支持的研究项目的地区(即大部分海洋),潜水员收集的发生数据可能是检测大型、移动海洋巨型动物种群变化的唯一可用信号。随后的eOceans分析研究了斐济的蝠鲼趋势、红海的礁鲨栖息情况以及COVID-19潜水活动停止对感知鱼类丰度的影响——所有这些问题都无法仅通过传统监测来回答。
iNaturalist:稀有物种检测的长尾效应
iNaturalist以不同的模式运作:它是一个开放平台,任何用户都可以上传任何生物的地理参考照片,并获得机器学习辅助的物种识别,随后由社区专家确认或改进。对于海洋环境,潜水员贡献了不成比例的记录份额,因为水下摄影现在在休闲潜水员中几乎是普遍的。2022年《生物多样性与保护》杂志的一项研究量化了iNaturalist记录在澳大利亚东南部珊瑚礁站点如何补充结构化RLS断面数据[8]。分析发现,iNaturalist贡献了47种RLS断面在相同地点未检测到的鱼类,这些鱼类不成比例地集中在隐秘、稀有和夜行分类群中——这正是视觉普查最不擅长检测的物种。当两者结合时,两种数据流产生的物种丰富度估计比任何一种单独的估计都高出18-32%,并且联合数据集在预测与海洋变暖相关的范围移动物种的出现方面明显更准确[8]。
这种互补性对于保护决策至关重要。低估稀有分类群的物种丰富度估计会系统性地低估珊瑚礁的保护价值,这可能会影响哪些区域被优先保护。iNaturalist的优势恰恰在于其广度:数千万用户生成的机会性观测,这些观测共同采样了任何结构化项目都无法有效针对的时间段、地点和行为模式。挑战在于iNaturalist数据固有地在空间和时间上偏向于易于访问、受欢迎的地点和白天活动——这与休闲潜水固有的偏见相同。要严格使用iNaturalist数据,需要进行占用模型,明确考虑检测概率。
技术前沿与综合监测之路
目前eDNA在热带珊瑚礁系统中的应用面临一些技术挑战。eDNA在温暖、暴露于紫外线、贫营养水域中会迅速降解——在浅水热带环境中,半衰期可能短至几个小时,这使得样本的空间和时间解释变得不那么简单[1]。许多无脊椎动物门类的参考条形码数据库仍不完整;来自多样化的印度洋-太平洋礁石的元条形码样本可能会产生大量与已知物种不匹配的读数——这代表着真正的未知物种或数据库漏洞。从元条形码读数中进行定量仍然存在争议:PCR扩增引入了偏差,这意味着读数丰度不能线性追踪生物丰度,从而限制了从存在/不存在数据到生物量估算的转变。
尽管存在这些挑战,但发展趋势显然是走向整合。目前正在试行的最宏大的监测框架——在大堡礁海洋公园、亚速尔群岛MPA网络和加利福尼亚MLPA监测项目等地——结合了由受过训练的公民科学潜水员进行的eDNA水样采集、由志愿者科学潜水员进行的RLS式结构化视觉断面调查、上传到iNaturalist的机会性照片记录,以及用于中生光区域深度的遥控水下机器人(ROV)调查。每种方法都涵盖了不同的分类群、深度和行为窗口;它们共同构成了近似全面的生态普查[4]。
政策影响已经显现。2022年,世界自然保护联盟(IUCN)建议MPA管理计划将公民科学数据集与机构监测明确结合起来,认识到理论上受保护的海洋面积与实际监测的面积之间的差距是一个根本性的保护失败——而志愿者潜水员和eDNA采样是弥合这一差距最实用的工具。对于休闲潜水员来说,这代表着一个将休闲活动转化为直接保护影响的机会:每一次标准化的潜水调查、每一次记录的物种、每一次收集的水样,都将添加到全球生态记录中,为未来几十年的海洋保护决策提供基础。
参考文献
- [1] Polanco Fernández A et al. Cross-ocean patterns and processes in fish biodiversity on coral reefs through the lens of eDNA metabarcoding. Proc R Soc B. 2022;289:20220162. doi:10.1098/rspb.2022.0162
- [2] Gold Z, Sprague J, Kushner DJ, et al. eDNA metabarcoding as a biomonitoring tool for marine protected areas. PLoS ONE. 2021;16(2):e0238557. doi:10.1371/journal.pone.0238557
- [3] Ecological indicators based on quantitative eDNA metabarcoding: the case of marine reserves. Ecol Indic. 2022;144:108966. doi:10.1016/j.ecolind.2022.108966
- [4] Capurso G, Carroll B, Stewart KA. Transforming marine monitoring: Using eDNA metabarcoding to improve the monitoring of the Mediterranean Marine Protected Areas network. Mar Policy. 2023;156:105807. doi:10.1016/j.marpol.2023.105807
- [5] Edgar GJ, Stuart-Smith RD. Systematic global assessment of reef fish communities by the Reef Life Survey program. Sci Data. 2014;1:140007. doi:10.1038/sdata.2014.7
- [6] Edgar GJ, Cooper A, Baker SC, et al. Reef Life Survey: Establishing the ecological basis for conservation of shallow marine life. Biol Conserv. 2020;252:108994.
- [7] Ward-Paige CA, Westell A, Sing B. eOceans dive-logs for science and conservation: a case study of sharks in Thailand. bioRxiv. 2018. doi:10.1101/296160
- [8] Roberts CJ, Vergés A, Callaghan CT, Poore AGB. Many cameras make light work: opportunistic photographs of rare species in iNaturalist complement structured surveys of reef fish. Biodivers Conserv. 2022;31:1407–1425. doi:10.1007/s10531-022-02398-6
- [9] Documenting fishes in an inland sea with citizen scientist diver surveys. Environ Monit Assess. 2022;194:227. doi:10.1007/s10661-022-09857-1
- [10] Optimizing a Novel eDNA-Based Framework for Reef Fish Biodiversity Monitoring Using an Autonomous Filtration System and in situ Nanopore Sequencing. Ecol Evol. 2026. doi:10.1002/ece3.73254

